Инфекция Borrelia burgdorferi у лошадей (болезнь Лайма) / Infection Borrelia burgdorferi in horses (Lyme disease)

Еще фото

Автор (ы):  И. Цачев, П. Маруцов, В. Петров, Кр. Господинова, Тракийский университет, Стара Загора, Болгария / I. Tsachev, P. Marutsov, V. Petrov, K. Gospodinova, Trakia University, Stara Zagora, Bulgarian

Перевод с болгарского Л.А. Калашникова

Аннотация

Болезнь Лайма (БЛ) является мультисистемным инфекционным заболеванием у многих видов позвоночных, включая человека и лошадей.

Summary

Lyme disease is a Multisystem infectious disease in many species of vertebrates, including humans and horses.

Ключевые слова: болезнь Лайма, спирохеты, иксодовые клещи, заражение

Key words: Lyme disease, spirochaetes, ticks, infect

История и распространение

В последние несколько десятилетий в литературе существует явная тенденция усиления внимания ис­следователей к БЛ. Начало заболевания связано со второй половиной 70-х гг. XX в. и городом Лайм в шта­те Коннектикут (США). Steere и его соавторы (1978 г.) описали эпидемию олигоартикулярного артрита у взрослых и детей. Позже Burgdorfer и др. (1982 г.) определили возбудителя заболевания. Отсюда по­явилось и видовое название инфекционного агента Borrelia burgdorferi. С развитием диагностики забо­леваний стало очевидно, что Borrelia burgdorferi не является единственным возбудителем БЛ. Подобные клинические проявления у человека связаны с дру­гими видами боррелии - Borrelia afzelii и B. garinii. Поэтому виды боррелий, этиологически связанные с симптомокомплексом БЛ, известны под собиратель­ным названием Borrelia burgdorferi sensu lato.

У лошадей клинические проявления заболевания являются редкими, имеется относительно небольшое количество научных работ, описывающих отдельные случаи заболевания (Burgess et al., 1986; Burgess and Mattison, 1987; Hahn et al., 1996; Liebisch et al., 1999).

Использование лабораторных диагностических тестов (серологических методов) БЛ показывает, что фактически инвазия спирохетами у лошадей характе­ризуется значительно более высокой распространен­ностью (Табл. 1).

Этиология

Бактерии Borrelia — это грамотрицательные спи­рохеты с длиной 3-30 мкм и поперечным диамет­ром 0,2-0,5 мкм. Они имеют от 3 до 8 нерегулярных спиральных извивов, с высотой отдельных спиралей 2-4 мкм. Представлены от 7 до 20 аксиально рас­положенных филаментов. Они могут быть визуали­зированы с помощью фазово-контрастной микро­скопии и темного поля. Боррелии требовательны с точки зрения их культивирования в культуральной среде, растут медленно (7-10 дней) на средах, обогащенных фетальной сывороткой или альбумином, в специфической среде BSK-II (BarbourStoennerKelly II) и др. Типичным для боррелий является то, что это не свободно живущие организмы и в течение 2-годичного цикла существуют на основе взаимоотношений «паразит-хозяин» (Hinnes, 2006).

Боррелии делятся на две основ­ные филогенетические группы: одна из них является возбудителями бо­лезни Лайма, а вторая объединяет спирохет, связанных с возвратным тифом. На основе генетических анализов в первую группу вклю­чены несколько видов спирохет с общим названием B. burgdorferi sensu lato (s.l.) - в широком смыс­ле. Основными видами, имеющими важное медицинское значение для Европы, являются Borrelia garinii и Borrelia afzelii, для Азии - Borrelia afzelii и для Северной Америки - B. burgdorferi sensu stricto - в бук­вальном (узком) смысле (Normal et al., 1996). Другие виды, имеющие доказательства в основном у лю­дей, - Borrelia valaisiana, Borrelia lusitaniae, Borrelia spielmanii и Borrelia bissettii.

Эпидемиология

В течение жизненного цикла боррелии, этиологи­чески связанные с БЛ, циркулируют среди иксодовых клещей и различных видов позвоночных - грызунов, птиц, диких и домашних животных, в том числе че­ловека, и др. (Ogden et al., 2011). В ветеринарной па­тологии Borrelia burgdorferi s.l. связана с собаками, кошками, лошадями, овцами, козами и крупным ро­гатым скотом.

БЛ является заболеванием, типичным для север­ного полушария с наибольшей частотой встречаемос­ти в умеренных географических широтах. В качестве зооноза она входит в число основных заболеваний, переносимых клещами. Единичные случаи заболева­ния в необычных для его зоогеографии местах, таких как Австралия и Новая Зеландия, были найдены у людей, которые путешествовали и жили к северу от экватора.

Основной механизм передачи инфекции - через укус инфицированного клеща. Установлены случаи контактного инфицирования человека при попадании спирохет на слизистые оболочки или поврежденную кожу после раздавливания инфицированного клеща.

Главным переносчиком заболевания являются иксодовые клещи, для Европы - это Ixodes ricinus, для Северной Америки - I. scapularis и I. pacificus, для Азии - I. persulcatus. Иксодовые клещи являются триксенными паразитами. При кровососании личин­ки и нимфы иксодовых клещей заражаются возбуди­телями от различных типов инфи­цированных малых позвоночных (обычно грызунов и низко гнездя­щихся птиц), выступающих в качест­ве резервуара инфекции в природе. Клещей следует рассматривать ско­рее как переносчиков болезни, а не в качестве природного резервуара возбудителей. Для них доказана трансфазная, но не трансовариальная передача спирохет. Для дру­гих видов клещей также показана возможность инвазии боррелиями при кровососании, но трансовари-альная и трансстадийная передача невозможна. Существенной осо­бенностью в отношении хранения возбудителя в иксодовых клещах и, следовательно, в передаче этой болезни является то, что они предпочитают те виды хозяев, от которых были инвазированы при предыду­щем хранении возбудителя.

Заражение происходит (как и для других позво­ночных) при продолжительном пребывании иксодовых клещей на хозяине. Лошади находятся в большей опасности на тех пастбищах, которые используются для полевых работ, а также для любительской или профессиональной верховой езды. Как правило, вы­сокие серотипы у лошадей связаны с эндемичными районами БЛ, где заболевание часто встречается как у людей, так и у животных. В Соединенных Штатах в 2000 г. Magnarelli с соавторами констатировали у ло­шадей степень распространенности БЛ более 45% в районе с эндемическим боррелиозом у человека.

Для европейского континента основным резервуа­ром возбудителя являются мелкие грызуны - поль­ская и обыкновенная лесная мышь (род Apodemus). С эпидемиологической точки зрения, важным ре­зервуаром в природе являются дикие и бродячие животные, особенно птицы. Последние при мигра­ции расширяют нозогеографические характеристики заболевания. Резервуаром для инфекции меньшего порядка являются также сельскохозяйственные жи­вотные и домашние любимцы.

Для Соединенных Штатов основным резервуа­ром инфекции в природе считаются белоногие мыши (Peromyscus leucopus), следом за ними белохвостый олень, североамериканская и красная белка.

Клиника

У лошадей, как и у других видов животных и че­ловека, высокая степень распространенности не сов­падает с клиническими проявлениями заболевания. Часто клинические признаки отсутствуют или име­ются неясные и непостоянные общие проявления. За постоянные признаки у лошадей принимают ско­ванность движений, хромоту одной или нескольких конечностей, ламинит, артрит (Рис. 1), повышенную чувствительность мышц, вплоть до болезненности, гиперестезию, вялость и изменения в поведении (Browning et al., 1993; DeVilbiss et al., 2009).

Потеря мышечной массы и боли в тораколюмбальной области встречаются у лошадей с высокими титрами антител (Рис. 2). В некоторых случаях заре­гистрированы и неврологические симптомы.

Невроборрелиоз Лайма описан у двух лошадей (Imai et al., 2011). У выживших лошадей наблюдает­ся гиперестезия, боли в поясничной области, потеря мышечной массы. На более поздней стадии болезни развивается атаксия, паралич лицевого нерва, де­прессия и тремор головы.

Priest и соавторы (2012) сообщали о двустороннем увеите (Рис. 3), выявленном у двух лошадей. Боррелии обнаружены при цитологическом исследовании и подтверждены ПЦР. У одной лошади увеит сопро­вождался мультифокальным лимфогистиоцитарным ганглиорадикулитом и невритом.

В другом случае описана лошадь с псевдолимфомами (множественными лимфогистиоцитарными кожными узелками) (Sears и др., 2012).

У серопозитивных лошадей наблюдались лихо­радка и отек конечностей. Возможность их связи с Anaplasma phagocytophilum не может быть отклоне­на в связи с тем, что многие виды клещей инфици­рованы двумя возбудителями (Chang и соавт., 2000).

При искусственном зара­жении B. burgdorferi у пони наблюдались в качестве пос­тоянных признаков кожные поражения и, в качестве не­постоянных, - мышечные, фасциальные, нервные и око­лосиновиальные изменения (Chang и соавт., 2000).

Патанатомия

При экспериментальных инфекциях наблюдались: лимфогистиоцитарные реакции кожи в месте прикрепления клеща в сочетании с лимфоидной гиперплазией регио­нальных лимфатических уз­лов (Рис. 4) (Chang et al.,1999; Chang et al., 2000; Chang et al., 2005) и негнойный синовит (Avanzi et al., 1998). У клини­ческих пациентов отмечали лимфогистиоцитарные воспа­ления синовиальных мемб­ран, менингит и увеит.

Диагностика

Лабораторная диагностика инфекции наиболее часто основана на серологических методах ИФА и ELISA (Johnson et al., 2008; Hansen et al., 2010; Wagner, 2011; Crisman, 2013; Divers, 2013). Однако интерпре­тация этих результатов требует контроля во времени, для того чтобы отличить текущую инфекцию от уже перенесенной (Johnson et al., 2008). Недавно тест ELISA C6 SNAP test (IDEXX Laboratories, Westbrook, ME) был верифи­цирован и успешно использо­ван в серодиагностике инфек­ции (Johnson et al., 2008).

Может быть использован Вестерн-блот метод, а также мультиплексный тест antibody bead test для количественно­го определения антител OSPA, OspC и OSPF (Рис. 5) (Wagner et al., 2011). Известно, что антитела OspC свидетель­ствуют о текущей инфекции (снижаются в последующие 3-4 месяца), а OSPF указыва­ют на хроническое течение заболевания; высокий про­цент антител OSPA выявлен у непривитых лошадей. Также можно использовать ПЦР и патогистологические методы (лимфоплазматическое или гистиоцитарное воспаление).

Терапия

Наиболее часто для лечения лошадей использу­ют следующие антибиотики: тетрациклин (IV), доксициклин (PO), а в последнее время - моноциклина гидрохлорид (PO) (Schnabel, 2012). Доксициклин не может быть использован внутривенно из-за наличия побочных эффектов (Riond et al., 1992), как и тетрациклин, при внутреннем применении вызывающий диарею (White and Prior, 1982). Протокол лечения чаще всего следующий: IV тетрациклин 6,6 мг/кг, каждые 24 ч (или 12 ч) в течение 7-10 дней с пос­ледующим PO доксициклина 10 мг/кг, каждые 12 ч, или PO миноциклина 4 мг/кг, каждые 12 ч в течение 1-2 месяцев. При использовании тетрациклина необ­ходим мониторинг почечной функции; у беременных кобыл тетрациклин может привести к аномалиям развития плода.

Хинолоны не подходят для лечения из-за разви­тия резистентности (Schutzer et al., 2011).

Профилактика

Для профилактики заболевания можно успеш­но применять различные инсектицидные спреи (Frontline, Advantix, Permethrin).

Для иммунопрофилактики применяют вакцины, которые используются для профилактики болезни Лайма у собак. Тем не менее, среди практикующих ветеринарных врачей и владельцев лошадей профи­лактика заболевания с использованием вакцины ос­тается спорным вопросом.

Здравоохранение

Существует минимальный риск заражения людей от лошадей, пораженных болезнью Лайма.

Литература

1. Avanzi S., Messa G., Marbini A. et al: Isolated neuritis of the sciatic nerve in a case of Lyme disease. Ital J Neurol Sci. 1998;19(2):81-85.

2. Bhide M., Yilmaz Z., Golcu E., Torun S., Mikula I. Seropreva-lence of anti-Borrelia burgdorferi antibodies in dogs and horses in Turkey, Ann Agric Environ Med. 2008;15:85-90.

3. Burgess E.C., Mattison M. Encephalitis associated with Bor­relia burgdorferi infection in a horse. J Am Vet Med Assoc. 1987;191:1456-8.

4. Burgess E.C., Gillette D., Pickett J.P. Arthritis and panuveitis as manifestations of Borrelia burgdorferi infection in a Wisconsin pony. J. Am. Vet. Med. Assoc. 1986;189:1340-1342.

5. Burgdorfer W., Barbour A.G., Hayes S.F., Benach J.L., Grun-waldt E., Davis J.P. Lyme disease - a tick-borne spirochetosis? Science. 1982;216:1317-1319.

6. Browning A., Carter S.D., Barnes A. et al. Lameness associ­ated with Borrelia burgdorferi infection in the horse. Vet Rec.

1993;132:610-1.

7. Bryant J.E., Brown M.P., Gronwall R.R. et al. Study of intragas­tric administration of doxycycline: pharmacokinetics including

body fluids, endometrial and minimum inhibitory concentra­tions. Equine Vet. J 2000;32(3):233-238.

8. Cohen N.D. Borreliosis (Lyme disease) in horses. Equine Veteri­nary Education. 1996;8:213-215.

9. Cohen N.D., Heck F.C., Heim B. et al. Seroprevalence of an-ibodies to Borrelia burgdorferi in a populaion of horses in central Texas. J. Am. Vet. Med. Assoc. 1992;201:1030-1034.

10. Chang Y., Novosol V., McDonough S.P: Vaccination against Lyme disease with recombinant Borrelia burgdorferi outer-sur­face protein A (rOspA) in horses. Vaccine. 1999;18(5-6):540-548.

11. Chang Y.F., Novosol V., McDonough S.P. Experimental infection of ponies with Borrelia burgdorferi by exposure to Ixodid icks.

Vet Pathol. 2000;37(1):68-76.

12. Chang Y.F., McDonough S.P., Chang C.F. et al. Human granu-locyic ehrlichiosis agent infecion in a pony vaccinated with a Borrelia burgdorferi recombinant OspA vaccine and challenged by exposure to naturally infected icks. Clin Diagn Lab Immu­nol. 2000;7:68-71.

13. Chang Y.F., Ku Y.W., Change C.F. et al: Antibiotic treatment of experimentally Borrelia burgdorferi-infected ponies. Vet Micro-biol. 2005;107(3-4):285-294.

14. Crisman M. Update on Tick-Borne Diseases (Lyme Disease). Proceedings of the 13th Internaional Congress of the World Equine Veterinary Associaion WEVA, Budapest, Hungary, October 3-5. 2013.

15. Divers T. Lyme Disease / in Equine Infectious Diseases, Edition Sellon D. Long M., 2nd. Elsevier, 2013:311-315.

16. Divers T. Equine Lyme Disease. Journal of Equine Vet Science.

2013;33:488-492.

17. Durrani A., Goyal S., Kamal. Retrospective Study on Seropreva-lence of Borrelia burgdorferi Anibodies in Horses in Minne­sota. Journal of Equine Veterinary Science. 2011;31:427-429.

18. DeVilbiss B.A., Mohammed H.O., Divers T.J. Perception of equine praciioners regarding the occurrence of selected equine neurologic diseases in the northeast over a 10-year period. J Equine Vet Sci. 2009;29:237-46.

19. Ebani V.V., Bertelloni F., Pinzauti P., Cerri D. Seroprevalence of Leptospira spp. and Borrelia burgdorferi sensu lato in Italian horses. Ann Agric Environ Med. 2012;19(2):237-40.

20. Egenvall A., Franzen P., Gunnarsson A., Engvall E.O., Vagsholm I., Wikstrom U. B., Artursson K: Cross-sectional study of the seroprevalence to Borrelia burgdorferi sensu lato and granulo-cyic Ehrlichia spp. and demographic, clinical and ick-exposure factors in Swedish horses. Prev Vet Med. 2001;49:191-208.

21. Fritz C.L., Kjemtrup A.M. Lyme Borreliosis. J Am Vet Assoc.

2003;223:1261-1270.

22. Gliga L., Dumitrache M., Spi'nu M. Serological Reactiv­ity to Borrelia burgdorferi Sensu Lato in Dogs and Horses from Disinct Areas in Romania. Vector Borne Zoonoic Dis. 2011;11(9):1259-62.

23. Hahn C.N., Mayhew I.G., Whitwell K.E. et al. A possible case of Lyme borreliosis in a horse in the UK. Equine Vet J.

1996;28:84-8.

24. Hansen M., Christoffersen M., Thuesen L. et al. Seroprevalence of Borrelia burgdorferi sensu lato and Anaplasma phagocy-tophilum in Danish horses. Acta Veterinaria Scandinavica.

2010;52(3):1-6.

25. Hinnes M. Equine Infecious Diseases, Debra C. Sellon. Elsevier Science Health Science Division, 2006: 310-313.

26. Johnson A.L., Divers T.J., Chang Y.-F. Validaion of an in-clinic enzyme-linked immunosorbent assay kit for diagnosis of Borrelia burgdorferi infecion in horses. J. Vet. Diagn. Invest.

2008;20:321-324.

27. Imai D.M., Barr B.C., Daft B. et al. Lyme neuroborreliosis in 2

horses. Vet Pathol. 2011;48:1151-7.

28. Kasbohrer A., Schonberg A. Serologic studies of the occurrence of Borrelia burgdorferi in domesic animals in Berlin (west). Berl Munch Tierarztl Wochenschr. 1990;103:374-8. [in German].

29. Kiss T., Cadar D., Krupaci A., Bordeanu A., Brudasxca G., Mihal-ca A., Mircean V. Serological reacivity to Borrelia burgdorferi sensu lato in dogs and horses from disinct areas in Romania. Vector Borne Zoonotic Dis. 2011 Sep; 11(9):1259-62.

30. Liebisch G., Assmann G., Liebisch A. 1999: Borrelia burgdorferi and Lyme borreliosis in horses in Germany. Prakische Tierarzt 80(6): 498-516 Ann Agric Environ Med. 2012;19(2):237-40.

31. Magnarelli L.A., Ijdo J.W., Van Andel A.E. et al. Serologic con­firmation of Ehrlichia equi and Borrelia burgdorferi infections in horses from the northeastern United States. J Am Vet Med

Assoc. 2000;217:1045-50.

32. Normal G.L., Antig J.M., Bigaignon G. et al. Serodiagnosis of Lyme borreliosis by Borrelia burgdorferi sensu stricto, B. garinii, and B. afzelii Western blots (immunoblots). J Clin Microbiol.

1996;34:1732-8.

33. Ogden N.H., Margos G., Aanensen D.M. et al. Investigation of genotypes of Borrelia burgdorferi in Ixodes scapularis icks collected during surveillance in Canada. Appl Environ Microbiol.

2011;77:3244-54.

34. Priest H.L., Irby N.L., Schlafer D.H., Divers T.J., Wagner B., Gla-ser A.L., Chang Y.F., Smith M.C. Diagnosis of Borrelia-associated uveitis in 2 horses. Vet Ophthalmol. 2012;15(6):398-405.

35. Riond J.L., Riviere J.E., Ducket W.M. et al. Cardiovascular efects and fataliies associated with intravenous admin-istraion of doxycycline to horses and ponies. Equine Vet J.

1992;24(1):41-45.

36. Sears K.P., Divers T.J., NefR.T. et al. A case of Borrelia-asso-ciated cutaneous pseudolymphoma in a horse. Vet Dermatol. 2012;23(2):153-6.

37. Magnarelli L., Fikrig E. Detection of antibodies to Borrelia burgdorferi in naturally infected horses in the USA by enzyme-linked immunosorbent assay using whole-cell and recombinant anigens. Res. Vet. Sci. 2005;79:99-103.

38. Maurizi L., Marie J.L., Aoun O., Courtin C., Gorsane S., Chal D. et al. Seroprevalence survey of equine lyme borreliosis in France and Sub-Saharan Africa. Vector Borne Zoonoic Dis.

2010;10:535-7.

39. Mathews L. Lyme Disease in Horses - Eye Problems to Watch out for. Lymediseaseguide.org, 2012. http://lymediseaseguide. org/lyme-disease-in-horses-eye-problems-to-watch-out-for.

40. Riond J.L., Riviere J.E., Duckett W.M. et al. Cardiovascular efects and fataliies associated with intravenous admin-istraion of doxycycline to horses and ponies. Equine Vet J. 1992;24(1):41-45.

41. Salinas-Melendez J.A., Avalos-Ramirez R., Riojas-Valdez V.M., Marinez-Munoz A. Serological survey of canine borreliosis. Rev. Lainoam. Microbiol. 1999;41:1-3.

42. Schnabel L., Papich M., Divers T., Altier M. et al. Pharmacoki-neics and distribuion of minocycline in mature horses ater oral administraion of muliple doses and comparison with minimum inhibitory concentraions. Equine Veterinary Journal. 2012;44(4):453-458.

43. Schutzer S.E., Fraser-Liggett C.M., Casjens S.R. et al. Whole-genome sequences of 13 isolates of Borrelia burgdorferi. J Bacteriol. 2011;193(4):1018-1020.

44. Steere A.C., Hardin J.A., Malawista S.E. Lyme arthriis: a new clinical enity. Hosp Pract. 1978;13(4):143-58.

45. Stefanclkova A., Derdakova M., Skardova I., Szestakova E., Cislakova L., Kovacova D., Stanko M., Petko B. Prevalence of anibodies to Borrelia burgdorferi in horses of east Slovakia. Vet

Med Czech. 2000;45:227-231 [in Czech].

46. Stefancikova A., Adaszek L., Petko B., Winiarczyk S., Dudinak V. Serological evidence of Borrelia burgdorferi sensu lato in horses and catle from Poland and diagnosic problems of Lyme bor-reliosis. Ann Agric Environ Med 2008;15:37-43.

47. Veronesi F., Laus F., Passamonti F., Tesei B., Piergili Fioretti D., Genchi C. Occurrence of Borrelia lusitaniae infecion in horses, Vet Parasitology. 2012; 160(3-4): 535-538

48. Wagner B., Freer H., Rollins S. et al. Development of a muliplex assay for the detecion of anibodies to Borrelia burgdorferi in horses and its validaion using Bayesian and concenial staisi-cal methods. Veterinary Immunology and Immunopathology. 2011;144:374-381.

49. Wagner B., Freer H., Rollins A. et al. Development of a muliplex assay for the detecion of anibodies to Borrelia burgdorferi

in horses and its validaion using Bayesian and convenional staisical methods. Vet Immunol Immunopathol. 2011;144(3-

4):374-381.

50. White G., Prior S.D. Comparative effects of oral administration of trimethoprim/sulphadiazine or oxytetracycline on the faecal flora of horses. Vet Rec. 1982;111(14):316-318.

51. White G., Prior S.D. Comparaive efects of oral administraion of trimethoprim/sulphadiazine or oxytetracycline on the faecal

lora of horses. Vet Rec. 1982;111(14):316-318.


Назад в раздел